Нажмите "Enter", чтобы перейти к контенту

Многоэтилическая природа туберкулезно-подобных повреждений у конформированных свиней на скотобойне

Multi-Etiological Nature of Tuberculosis-Like Lesions in Condemned Pigs at the Slaughterhouse
Источник: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4587938/

Конкурирующие интересы: авторы заявили, что конкурирующих интересов не существует.

Задуманные и разработанные эксперименты: FCT JGL LC IL. Проводили эксперименты: FCT JGL SPA IL. Проанализированы данные: FCT JGL SPA AIV LC JFFG RJA IL. Используемые реагенты / материалы / инструменты анализа: AIV JFFG. Написал документ: FCT JGL AIV JFFG IL. Окончательный обзор рукописи: FCT JGL SPA AIV LC JFFG RJA IL.

Туберкулезные поражения (TBL) у свиней были связаны с микроорганизмами, отличными от микобактерий. В этой работе показана гистопатологическая и микробиологическая оценка TBL у свиней. В общей сложности 352 образца, принадлежащих 171 свиньи, полностью осужденных на скотобойне из-за генерализованного ТБЛ, отбирали и отбирали для анализа. На всех проанализированных органах наблюдались пиогранулематозные (56,2%) и гранулематозные поражения (20,2%). Большинство гранулем, наблюдавшихся как в лимфатических узлах, так и в легких, относятся к более продвинутым стадиям развития (этапы III и IV), тогда как в печени и селезенке большая часть поражений относится к промежуточным стадиям (этапы II и III). Различные микроорганизмы были одновременно обнаружены у TBL у 42,7% животных. Основными группами микроорганизмов, выявленных после бактериологического анализа, были микобактерий туберкулезный комплекс (МТС) (38%), коринеформные бактерии (40,3%) и стрептококки (28,1%), которые были обнаружены после бактериологического анализа, причем Trueperella pyogenes и Streptococcus suis являются наиболее часто выделенными видами. Микобактерии, принадлежащие МТК, были наиболее часто выявляемыми патогенами в гранулематозных и пиогрануломатозных поражениях в подчелюстных лимфатических узлах (32,7%), а коринеформные бактерии были микроорганизмами, которые чаще выделялись из легких (25,9%) и образцов селезенки (37,2%). Эти результаты могут дать новое представление о патогенезе и диагностике этой патологии. Важность коринеформных бактерий и стрептококков в таких процессах должна оцениваться в будущих исследованиях.

Все соответствующие данные приведены в документе.

Туберкулезные поражения (TBL) могут быть важной причиной осуждения свиней при осмотре бойцов, представляющих значительные важные экономические потери [1]. У свиней эти поражения описаны как некротизированные кальцифицированные, пролиферативные или гнойные грубые поражения, совместимые с туберкулезом (ТБ) [2, 3]. Хотя TBL у свиней часто ограничивается головными лимфатическими узлами, также могут быть затронуты различные места в теле, такие как другие лимфатические узлы и грудные или брюшные органы [3, 4].

Гранулематозные и пиогрануломатозные поражения могут быть идентифицированы в TBL в соответствии с клеточными компонентами [5]. Гранулемы, как основные поражения, связанные с туберкулезом, были широко классифицированы на разных стадиях развития, что может помочь в интерпретации прогрессирования заболевания [4, 6, 7, 8]. Более продвинутые стадии гранулем связаны с первичными очагами инфекции [3,4], но также с более низкой бактериальной нагрузкой [3,6].

Комплекс Mycobacterium avium (MAC), Mycobacterium tuberculosis complex (MTC) и Rhodococcus equi был зарегистрирован как наиболее часто ассоциируемый с TBL вид, и эти инфекции обычно приводят к неразличимым грубым поражениям у свиней [5, 9, 10, 11, 12, 13]. Другие роды, такие как Corynebacterium spp., Streptococcus spp. или Staphylococcus spp., также были выделены при казеозном лимфадените у свиней, подчеркнув потенциальное разнообразие возбудителей, которые могут быть связаны с TBL у этого вида [1, 14, 15]. Это разнообразие микроорганизмов вместе с зоонозным характером некоторых из них являются факторами, которые должны рассматриваться органами общественного здравоохранения [1].

Подробные исследования, посвященные оценке относительной важности микроорганизмов, отличных от Mycobacterium spp. идентифицированных у TBL у свиней, мало [1, 10]. В этой работе показана гистопатологическая и микробиологическая оценка TBL у свиней. Результаты этого исследования могут помочь лучше понять взаимодействие между микроорганизмами у свиней, пораженных TBL, для улучшения знаний о патогенезе и диагностике этой патологии.

Это исследование не предполагало целенаправленного убийства животных. Образцы были собраны у свиней после обычных процедур по убою и контролю мяса. Никакое этическое утверждение не было сочтено необходимым.

В период с января 2011 года по июнь 2014 года на двух разных бойнях было отобрано 171 свиньи, в которых туши были полностью осуждены в связи с идентификацией генерализованного заболевания в соответствии с европейским регламентом по контролю за мясом (правило 2004/854 / ЕС). antemortem клинический осмотр были, по-видимому, здоровыми свиньи на дальнем расстоянии более 14 месяцев, поднятыми в обширных системах из 56 ферм, расположенных на юго-западе Иберийского полуострова (районы Андалусии и Эстремадуры в Испании). После процедур проверки мяса выбранные органы, пораженные TBL, отбирались в соответствии с предыдущими отчетами [2,3], включая подчелюстные лимфатические узлы, легкие, печень и селезенку для оценки рассеянных поражений [3,4,9] (рис. 1A и 1B). Из этих животных в общей сложности 352 образца были удалены на бойне и доставлены в лабораторию для анализа. Чтобы избежать перекрестного загрязнения, для сбора и транспортировки образцов от каждого животного использовали разные наборы стерильных инструментов и флаконов. По возможности одно четко определенное поражение было выбрано в каждом органе, которое было разделено на две части: одна часть была подвергнута гистопатологическому анализу, а другая немедленно была отправлена ​​в бактериальную культуру и заморожена при -20 ° С для проведения анализов qPCR [12] , Однако, когда наблюдались мелкодисперсные рассеянные поражения, были отобраны и представлены в каждом анализе поражения, которые были похожи по внешнему виду и сконцентрированы в одной местности.

A) TBL в подчелюстной лимфатический узел пораженной свиньи. Бар, 1 см. B) TBL в селезенке пораженной свиньи. Бар, 1 см. C) Микроскопическое изображение поражений TBL в лимфатическом узле пораженного животного, показывающее обильный инфильтрат дегенерированных нейтрофилов. ОН. Бар, 200 мкм. D) Кластеризованные эпителиоидные макрофаги, окруженные лимфоцитами и эритроцитами в гранулеме стадии I в печени. ОН. Бар, 50 мкм. E) Гранулемы коалесценции стадии II в лимфатическом узле свиньи, демонстрирующие эпителиоидные макрофаги, полностью закрытые тонкой капсулой с периферической инфильтрацией рассеянных лимфоцитов. ОН. Бар, 100 мкм. F) Гранулема III стадии с центральным некротическим сердечником, частично минерализованным, окруженная плотной капсулой соединительной ткани, инфильтрированной лимфоцитами и рассеянными нейтрофилами. ОН. Бар, 100 мкм. G) Густо инкапсулированные, большие нерегулярные многоцентровые гранулемы с выраженным казеозным некрозом и многофокальными островками минерализации (гранулемы стадии IV). ОН. Бар, 500 мкм.

Субмандибулярные лимфатические узлы, легкие, образцы ткани печени и селезенки фиксировали в 10% нейтральном буферизованном формалине и 4 мкм срезах окрашивали гематоксилин и эозин для гистопатологического исследования и методом Циля-Нильсена (ZN) для выявления кислотоустойчивых бацилл (AFB ) с помощью световой микроскопии [2, 8]. Каждый образец был классифицирован в соответствии с идентификацией конкретных структур, а именно эпителиоидной клетки, многоядерной гигантской (MNG) клетки, инфильтрации лимфоцитов и / или нейтрофилов, образования капсул соединительной ткани, отложений антиген-антитело, некроза и минерализации. Наличие гранулем с эпителиоидными клетками и клетками MNG в отсутствие инородных тел или грибковых структур считалось совместимым с диагнозом ТБ. Гранулемы были классифицированы на четыре стадии (I-IV) на основе патологической характеристики ранее выявленных гранулем TB [7, 8] (рис. 1D-1G). Поражения, характеризующиеся некротическим сердечником с обильной инфильтрацией нейтрофилов, окруженной эпителиоидными клетками и краем соединительной ткани с инфильтратом мононуклеарных клеток, были описаны как пиогрануломы (рис. 1С).

Наличие MTC и MAC в поражениях было проверено с использованием дуплексной ПЦР в реальном времени (qPCR), ранее подтвержденной нашей исследовательской группой [16]. Жировые и соединительные ткани удаляли из пораженных органов, и впоследствии их измельчали ​​на мелкие кусочки со стерильными ножницами. Для каждого образца до 2 г ткани гомогенизировали в столяре с 10 мл стерильной дистиллированной воды в течение 2 мин. Полученный раствор центрифугировали в течение 10 мин при 1400 г, получая осадок для каждого образца. Геномную ДНК экстрагировали из 25 мг гомогената ткани с использованием набора для выделения ДНК из ткани NucleoSpin® (Macherey-Nagel GmbH, Дюрен, Германия) в соответствии с инструкциями производителя. Выход и качество ДНК определяли с использованием спектрофотометра NanoDrop 3300 (Thermo science).

Все реакции проводили в двух экземплярах в термоциклере Agilent Technologies Mx3000P при следующих условиях: начальная денатурация при 95 ° С в течение 10 мин, 40 циклов амплификации, состоящая из денатурации при 95 ° С в течение 30 с, отжиг праймера при 65 ° С для 30 сек и удлинение при 72 ° С в течение 30 секунд. Чтобы проверить специфичность амплифицированных продуктов, ДНК из изолятов M. bovis и M. avium и контрольные образцы без шаблонов были включены в каждый анализ и использовались в качестве положительного и отрицательного контроля соответственно.

Окрашивание ZN проводили в образцах тканей, отрицательных к qPCR, и исследовали для AFB, как описано Santos et al. [2].

Мазок из каждого образца, поданного в бактериальную культуру, высевали на основание агара крови и основание агара крови Колумбии с налидиксовой кислотой и колистинсульфатом (Oxoid ltd., Hampshire, UK), дополненную 5% стерильной дефибринированной овечьей кровью и инкубировали как в аэробных, так и в аэробных и микроаэрофильных (5% СО2) условиях при 37 ° C в течение 48 часов. Одна представительная колония наиболее распространенных морфологически отличных колоний отбиралась, подкультуривалась и выращивалась в тех же условиях для дальнейшей биохимической идентификации. Грам-окрашивание, бактериальная морфология и производство каталазы и цитохромоксидазы выполнялись в качестве предварительных тестов на идентификацию в соответствии со стандартными процедурами [17]. Дальнейшая биохимическая идентификация проводилась с использованием коммерческих идентификационных галерей (API®Coryne, API®20Strep, API®20E и API®20NE, bioMérieux, Marcy-l’Etoile, Франция) в соответствии с инструкциями производителя. Изоляты были идентифицированы как особый вид только в том случае, если показатели идентификации в системах с несколькими субстратами были отличными, очень хорошими или хорошими (99,9-99,0% ID); в противном случае идентификация производилась только на уровне рода (spp.). Тест лакейной агглютинации для идентификации стрептококковых групп (набор стрептококковой группировки, Oxoid ltd, Hampshire, UK) и тест Кристи Аткинса Мунк-Петерсена (тест CAMP) были использованы для идентификации, если необходимо, согласно предыдущим сообщениям [18, 19, 20] , Чистые культуры каждого изолята хранили при -70 ° С.

Были идентифицированы изоляты бактерий Coryneform (грамположительные, каталазные переменные и оксидаза-отрицательные стержни неправильной формы) с применением секвенирования гена 16S рРНК из-за ограниченной способности биохимических методов к различию между видами [21]. Ген 16S рРНК каждого изолята амплифицировали с помощью ПЦР и далее секвенировали для определения генотипической идентичности [22]. Определенные последовательности состоят из около 1400 нуклеотидов и сравниваются с последовательностями других грамположительных видов, доступных в базе данных GenBank, с использованием программы FASTA (http://www.ebi.ac.uk/fasta33).

Были оценены 352 образца из 171 убитых свиней с TBL. Пиогранулема была поражением, наиболее часто встречающимся во всех исследованных органах (198/352; 56,2%) (таблица 1) примерно у 60% животных (104/171, 60,8%).

aSLN: подчелюстные лимфатические узлы.

Гранулематозные поражения наблюдались в 71/352 (20,2%) образцах, описанных у 38/171 животных (22,2%). Наличие сопутствующих пиогрануломатозных и гранулематозных поражений в разных органах наблюдалось у 14 из 171 животных (8,2%). Некротические очаги или поражения, демонстрирующие интенсивную минерализацию и фиброз, с отсутствием эпителиоидных клеток или MNGCs (13/352, 3,7%) отдельно рассматривались, поскольку эти поражения не могли быть четко классифицированы как пиогрануломы или гранулемы. Другие поражения, такие как интерстициальная пневмония, катарально-гнойный бронхит, перипортальный фиброз, периспленит и интерстициальный и мультифокальный гепатит, также были обнаружены в отсутствие гранулематозных или пиогрануломатозных поражений (71/352, 20,2% образцов и 1/171, 0,6% животных) , Наконец, в уменьшенном числе случаев поражения не были обнаружены (38/352, 10,8% образцов и 9/171, 5,3% животных).

Гранулемы наблюдались главным образом в образцах подчелюстных лимфатических узлов и в меньшей степени в печени, легких и селезенке (табл. 1). Что касается стадии гранулем, 31% гранулем принадлежали к начальным стадиям (I и II), тогда как 69% гранулем были включены в стадии III и IV. Эта картина была подтверждена для образцов лимфатических узлов и легких, тогда как в селезенке и печени большая часть гранулем принадлежала стадиям II и III (таблица 2).

aSLN: подчелюстные лимфатические узлы.

Геном MTC амплифицировали на образцах от 65 животных (65/171 животных, 38%). В 44 из этих 65 животных были обнаружены генерализованные TBL, поражающие подчелюстные лимфатические узлы и другие органы (легкие, печень или селезенка). В 25 из этих 44 животных (56,8%) МТЦ обнаруживался только в подчелюстных лимфатических узлах; в 6/44 (13,6%) микобактерии были обнаружены в подчелюстных лимфатических узлах и легких, печени и / или селезенке; тогда как у 13/44 животных (29,5%) микобактерии были обнаружены только в легких, печени или селезенке (данные не показаны). MAC был обнаружен только в одном случае, связанном с пиогранулематозными поражениями в печени.

AFB регистрировали в 15/269 (5,6%) отрицательных образцах qPCR и в 9/105 (8,6%) отрицательных животных qPCR путем окрашивания ZN.

Всего после бактериологической культуры было получено 235 изолятов (таблица 3). Из-за большого количества бактериальных видов, обнаруженных в низких процентах, анализ был сфокусирован на коринеформных бактериях и стрептококках в качестве основных групп микроорганизмов, обнаруженных в этом исследовании, помимо MTC. Бактерии коринеформ были идентифицированы в 100 из 235 изолятов (42,5%) и были выделены из 69 животных (40,3%). Большинство коринеформных микроорганизмов были идентифицированы как пигменты Trueperella (ранее Arcanobacterium pyogenes) (72%), которые были выделены из значительного числа (69,6%) исследованных животных (таблица 3). Стрептококки также идентифицировали в значительном количестве изолятов (65/235, 27,7%) и животных (48/171, 28,1%). Streptococcus suis был наиболее часто идентифицированным в этой группе (40% изолятов и 47,9% животных, в которых были выделены стрептококки), а затем Streptococcus porcinus и Streptococcus dysgalactiae spp. equisimilis (таблица 3).

aRhodococcus boritolerans, Dietzia timorensis, Pseudoclavibacter spp, Brevibacterium spp и Actinomyces masicol (1 изолят / каждый)

bStreptococcus spp. (3 изолята), S. mitis, S. rattus и S. bovis (1 изолят / каждый)

сЕ. фециум (8 изолятов) E. durans (3 изолята), E. faecalis (6 изолятов), E. gallinarum и E. avium (1 изолят / каждый)

Округ Колумбия. maltaromaticum (16 изолятов) и C. divergens (1 изолят)

еА. urinae (7 изолятов), A. viridans (4 изолята) и A nurinaequi (2 изолята)

фс. sciuri, S. xylosus (2 изолята / каждый), Staphylococcus spp., S. aureus и S. haemolyticus (1 изолят / каждый)

gLeuconostoc spp. (4 изолята), Escherichia coli (2 изолята) Mezorhizobium spp., Halospirulina spp., Glanulicatella spp. и Lactococcus lactis (1 изолят / каждый)

Частота выявления микроорганизмов в TBL из исследованных органов показана в таблице 4. МТС, коринеформные бактерии и стрептококки были обнаружены во всех анализируемых органах. MTC чаще обнаруживался в подчелюстных лимфатических узлах (32,7%), тогда как коринеформные бактерии чаще выделялись из легких (25,9%) и селезенки (37,2%). T. pyogenes был видом, идентифицированным в более чем 60% случаев, связанных с коринеформными бактериями во всех исследованных органах (данные не показаны). Стрептококки были одинаково изолированы от поражений всех исследованных органов.

aSLN: подчелюстные лимфатические узлы.

Бактерии, идентифицированные из разных типов поражений, суммированы в таблице 5. Двадцать три животных (13,4%) дали отрицательные результаты как при микробиологических исследованиях, так и в исследованиях qPCR, несмотря на то, что они представили микроскопические поражения. У 75 (43,9%) свиней был идентифицирован один микроорганизм, тогда как у 73 (42,7%) животных были обнаружены два или более микроорганизма. Выделение коринеформных бактерий из положительных свиней MTC было частым (10,5%), причем T. pyogenes идентифицировали в 77,8% (14/18) этих случаев. Кроме того, у животных, инфицированных MTC (16,9%), были выделены различные виды коринеформных бактерий, в то время как T. pyogenes идентифицировали основные виды (17/29, 58,6%).

aGranulomatous и pyogranulomatous поражения, обнаруженные у того же животного

bНекротические или кальцинированные очаги (5/15) и другие повреждения или отсутствие повреждений (10/15)

Микобактерии, принадлежащие к MTC, были идентифицированы в 19/38 (50%) свиней, у которых гранулема была единственным обнаруженным поражением (таблица 5). Бактерии, отличные от микобактерий, также были обнаружены из гранулематозных поражений у 13/38 животных (34,2%), тогда как микроорганизмы не были идентифицированы в 6/38 (15,8%). Однако, когда пиогранулема считалась единственным поражением, большинство животных были отрицательными к MTC (70/104, 67,3%) (таблица 5). Основными микробными агентами, выделенными из этих поражений, были бактерии Coryneform (50/104, 48,1% животных) и реже стрептококки (26/104, 25% животных).

Туберкулезные поражения включают в себя широкий спектр поражений, сильно совместимых с ТБ [2, 3]. Однако предыдущие исследования показали, что патогены, отличные от микобактерий, могут вызывать неразличимые поражения у свиней [10]. Для оценки точного диагноза TBL у свиней необходимо установить участие различных патогенов в развитии этих поражений и установить эффективные меры борьбы с этим заболеванием [1].

В этом исследовании пиогранулема была преобладающим очагом поражения (104/171 животное, 60,8%), причем гранулема была обнаружена только у 38 из 171 животных (22,2%). Большое количество обнаруженных в настоящем исследовании пиогранулематозных поражений (198/352 образца, 56,2%) указывает на важность гнойных бактерий в этиологии TBL у свиней. Фактически, был обнаружен широкий спектр бактерий, относящихся к двадцати различным родам. MTC было обнаружено у 65 (38%) животных вместе с важным участием коринеформных бактерий и стрептококков (40,35% и 28,1% положительных животных соответственно). Эти результаты подтверждают многоэтериологическую природу TBL.

Обнаружение множественных микробных агентов было частым (42,7% анализируемых животных), что подчеркивало важность проведения тщательного микробиологического исследования TBL для наблюдения за болезнями [1]. MTC, коринеформные бактерии (включая T. pyogenes, Corynebacterium spp. И родственные роды) и стрептококки были патогенами, чаще обнаруживаемыми из TBL. Другие микроорганизмы также идентифицированы, но с более низкой частотой (Staphylococcus spp., Pasteurella multocida, Enterococcus spp., Carnobacterium spp., Aerococcus spp.) Могут быть выделены из окружающей среды, фекалий, кожи и слизистых оболочек свиней [23], но их важность в этом процессе неизвестна. Поэтому наш анализ был сфокусирован на наиболее представительных группах патогенов, выявленных в исследовании.

MTC и MAC могут играть разные роли в TBL в зависимости от распространенности туберкулеза крупного рогатого скота. В этом смысле M. avium является основными микобактериями, выделенными из TBL в официально бывших странах, свободных от туберкулеза [24], а также в откормах свиней, выращенных в интенсивных системах [25]. Тем не менее, в странах, где туберкулез все еще распространен у крупного рогатого скота и дикой природы, MTC часто обнаруживается у TBL у свиней свободного пробега [2, 9, 13]. Свиньи этого исследования были разведены в свободно распределенной системе, разделяющей природные ресурсы с другими дикими и домашними животными в географическом районе, где была описана высокая распространенность зараженных туберкулезом диких кабанов [26]. Контакт и перекрестная инфекция между этими группами населения могут возникать, как сообщалось в других областях Испании [9]. Соответственно, MTC было обнаружено преимущественно из TBL в нашем исследовании.

Частота выделения Rhodococcus equi в нашем исследовании (4/171, 2,3% животных) была значительно ниже, чем сообщалось ранее у свиней, отрицательная по отношению к микобактериям и выращенная в интенсивных фермах в Нидерландах [10]. Несмотря на то, что дальнейшие исследования считаются необходимыми для выяснения этих различий, некоторые факторы, такие как восприимчивость породы, управление стадом и экология бактерий, могут играть определенную роль. Коринебактерии, отличные от Rhodococcus equi, спорадически связаны с тяжелым казеозным лимфаденитом у свиней, включая Corynebacterium ulcerans и Corynebacterium pseudotuberculosis [14, 15]. В настоящем исследовании Corynebacterium suicordis был основным видом, выделенным в этом роде, но его относительная важность была низкой. Основным видом этой группы была Т. pyogenes. Этот патоген участвует в различных гнойных инфекциях у свиней и жвачных животных, включая метриты, вымени, абсцессы, пневмонию, артрит, эндокардит, лимфаденит и остеомиелит [27, 28, 29]. Хотя Т. pyogenes ранее был связан с казеозным лимфаденитом у свиней [1], его относительная важность была низкой по сравнению с нашим исследованием.

Аналогично Lara et al. [1] стрептококки были обнаружены в большом проценте животных. Интересно, что S. suis был наиболее часто идентифицированным в этой группе. Этот микроорганизм связан с широким спектром заболеваний у свиней, таких как менингит, артрит, бронхопневмония, эндокардит, полисерозит и сепсис и считается новым зоонозным агентом у людей, вторичным по отношению к экспозиции свиней и свинины [30]. Два других стрептококковых вида более часто выделяются, Streptococcus porcinus и Streptococcus dysgalactiae spp. equisimilis, также часто изолированы от свиней с гнойными инфекциями [27, 31].

Отрицательные бактериологические результаты наблюдались в соответствии с предыдущими сообщениями [1, 2, 32]. Эти результаты могут быть отнесены к ложно отрицательным результатам бактериологии или животных с развитыми поражениями, в которых невозможно было получить жизнеспособные микроорганизмы. В этом смысле 21,7% (5/23) животных, которые показали микроскопические повреждения, но были отрицательными как для бактериальной культуры, так и для qPCR, показали АФБ на гистопатологическом обследовании, предполагая возможное участие микобактерий в нескольких из них.

Выделение Coryneform бактерий из MTC-отрицательного TBL было чаще всего наблюдалось у животных, пораженных пиогранулематозными поражениями (24/104, 23,1%). Эти результаты подтверждают идею о том, что гнойные бактерии могут образовывать TBL у свиней без участия микобактерий. В этом смысле, хотя следует учитывать ложные отрицательные результаты анализа qPCR, AFB регистрировались только при поражении двух из этих животных. Альтернативно, одновременное обнаружение коринеформных бактерий и MTC также было частым, что указывало на возможное участие этой микробной ассоциации у свиней, пораженных TBL.

Гранулемы наблюдались преимущественно в подчелюстных лимфатических узлах и в меньшей степени в других местах тела. Подчелюстной лимфатический узел был органом, в котором МТК чаще обнаруживался, а затем печень, легкие и селезенка. Интересно отметить, что МТК был идентифицирован аналогичным образом как с образцами печени, так и с легкими, причем большая часть гранулематозных поражений относится к этапам III и IV. Эти результаты подтверждают теорию о том, что как дыхательные, так и пищеварительные пути заражения играют важную роль у свиней, как было предложено ранее [4, 9].

Несмотря на то, что некоторые авторы предположили, что генерализованный туберкулез у свиней является частым [3, 33], другие сообщили об ограничении TBL на головные лимфатические узлы или реже на дыхательные пути [2, 9, 34]. Наши результаты согласуются с этим последним утверждением, поскольку МТК обнаруживается только в подчелюстных лимфатических узлах у более чем половины животных. Интересно, что геномные бактерии, включая T. pyogenes, Streptococcus spp. И Corynebacterium spp., Были выделены из TBL, наблюдаемого в других органах у этих MTC-положительных животных (данные не показаны). Эти выводы следует принимать во внимание, чтобы избежать ошибочного диагноза генерализованного туберкулеза на основе грубой инспекции и провести дальнейшие исследования, чтобы определить истинную роль этих агентов, особенно T. pyogenes в пиогрануломатозных поражениях у свиней

Результаты этого исследования показывают, что широкий спектр микроорганизмов, отличающихся от микобактерий, может быть выделен из TBL у свиней, причем коринеформные бактерии и стрептококки в качестве микроорганизмов наиболее часто обнаруживаются помимо MTC. Показана также высокая частота обнаружения T. pyogenes в пиогранулематозных поражениях. Эти результаты следует рассмотреть, чтобы предотвратить неправильное диагностирование туберкулеза на основе грубых поражений и установить конкретные меры борьбы с этими патогенами у свиней.

Комментариев нет.

Добавить комментарий

Ваш e-mail не будет опубликован. Обязательные поля помечены *